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微流控芯片電泳分離血清高密度脂蛋白亞類的研究

高密度脂蛋白(HDL)是一種由脂質(zhì)和蛋白質(zhì)構(gòu)成的,在形狀、密度、顆粒大小、電荷和理化特性等方面都具有較大異質(zhì)性的脂蛋白,它參與膽固醇逆運(yùn)轉(zhuǎn),具有抗動脈粥樣硬化(atherosclerosis,AS)作用。HDL亞類成分可以作為評估AS的危險因素,與冠心病(CHD)密切相關(guān),但對于亞類HDL2和HDL3的相對重要性問題在臨床上一直存在分歧,國際上仍未得到統(tǒng)一認(rèn)識,其中一重要原因是因?yàn)槿狈喴住?zhǔn)確的HDL亞類分析方法

微流控芯片電泳能夠快速高效分離分析DNA氨基酸蛋白質(zhì)細(xì)胞等,分離效率高、重復(fù)性好本研究利用自制的石英芯片結(jié)合激光誘導(dǎo)熒光(LIF)檢測系統(tǒng),在本研究組前期研究基礎(chǔ)上進(jìn)一步改良,可簡便、高效分離出HDL亞類,并對健康體檢者和CHD患者血清標(biāo)本進(jìn)行分析,初步探討了微流控芯片電泳用于HDL亞類分析的臨床應(yīng)用價值

1材料和方法

1.1 標(biāo)本來源

南通大學(xué)附屬醫(yī)院經(jīng)冠狀動脈造影證實(shí)的CHD患者、排除心腦血管疾病及其他影響血脂代謝疾病的健康體檢者

1.2 試劑與儀器

1.2.1 試劑濃度為15.5g/L的HDL標(biāo)準(zhǔn)品、Tricine、甲基葡胺(MEG)、十二烷基硫酸鈉(SDS)、乙二醇、甲醇、磷鎢酸PTA)、氯化鎂(MgCl2)、溴化鉀(KBr);硝基苯并噁二唑-C6-酰基鞘胺醇(NBDC6-ceramide);沉淀劑按照中華醫(yī)學(xué)會檢驗(yàn)學(xué)分會推薦的PTA-Mg沉淀法中描述配制(1.52mmol/LPTA、0.05mol/LMgCl2,pH6.1);樣品緩沖液由40mmol/LTricine、50mmol/LMEG、0.2mmol/LSDS(pH8.5)組成;分離緩沖液由40mmol/LTricine、50mmol/LMEG、0.01mmol/LSDS(pH8.5)組成所用試劑均為分析純,配制試劑用水為二次蒸餾水,試劑配置好后均用0.22滋m的濾膜過濾

1.2.2 儀器LIF檢測系統(tǒng)(自行研制);OptimaTML-90K型超速離心機(jī);7600-020全自動生化分析儀;CX系統(tǒng)電源(0~5000V)

1.2.3 自制芯片石英玻璃經(jīng)光刻、濕法腐蝕、高溫鍵合而成結(jié)構(gòu)見圖1整個芯片大小為64mm伊32mm,芯片微管道寬100滋m,深約25滋m,芯片樣品池到十字交叉點(diǎn)長4mm,有效分離長度為42mm,儲液池的直徑為2mm樣品池1和樣品廢液池2間通道用于進(jìn)樣,緩沖液池3和緩沖液廢液池4間通道用于電泳分離

 Fig.1Structureforthemicrochip(a)Chip.(b)TheSEMphotographforthecross-pointchannel.


Fig.1Structureforthemicrochip(a)Chip.(b)TheSEMphotographforthecross-pointchannel.1:Samplereservoir;2:Samplewasterreservoir;3:Bufferreservoir;4:Bufferwasterreservoir.

1.3 方法

1.3.1 標(biāo)本準(zhǔn)備受試者素食3天后,清晨空腹采血3ml,以3000r/min離心10min后分離血清,所取血清標(biāo)本加入同體積沉淀劑,充分混勻,置室溫15min后3000r/min離心15min,離心后吸出上清液供測定要求4h之內(nèi)完成分離檢測,或-70℃保存HDL標(biāo)準(zhǔn)品預(yù)處理過程:1滋lHDL標(biāo)準(zhǔn)品加入10滋l去離子水,再加入4滋l0.2g/LNBDC6-ceramide(以v(乙二醇)∶v(甲醇)=9∶1混合液預(yù)先溶解)避光預(yù)染1min,最后加入60滋l樣品緩沖液血清標(biāo)本預(yù)處理過程:6滋l預(yù)測血清加入2滋l去離子水,再加入4滋l0.2g/LNBDC6-ceramide避光預(yù)染1min,最后加入20滋l樣品緩沖液

1.3.2 電泳過程在芯片樣品廢液池、緩沖液池、緩沖液廢液池中加入分離緩沖液,并使通道內(nèi)充滿分離緩沖液在樣品池中加入樣品,使激光束聚焦于芯片分離通道下檢測點(diǎn)處按下列程序分別向4個儲液池施加電壓,進(jìn)行進(jìn)樣和分離操作:進(jìn)樣45s,樣品池、樣品廢液池、緩沖液池、緩沖液廢液池分別施加760V、0V、300V和450V電壓;分離4min,樣品池、樣品廢液池、緩沖液池、緩沖液廢液池分別施加500V、500V、3500V和0V電壓運(yùn)行溫度25℃,分離電場強(qiáng)度為450V/cm.

1.3.3 電泳原理石英芯片微通道表面在緩沖液是堿性的情況下,硅羥基解離產(chǎn)生負(fù)電荷,緩沖液中陽離子在芯片管壁負(fù)電荷表面形成一圓筒形的陽離子鞘,在外加電場作用下,攜帶溶劑一齊向陰極遷移,便形成電滲流管道中HDL亞類的遷移速度是外加電場、溶劑阻力與電滲流作用的結(jié)果,由于電滲流的作用通常大于帶電粒子所受電場力作用,所以樣品粒子在管道進(jìn)行與電滲流方向一致的差速遷移最后通過末端檢測器的檢測并記錄得到電泳圖譜

1.3.4 統(tǒng)計(jì)分析采用SPSS11.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,數(shù)據(jù)用x依s表達(dá)組間差異比較使用方差分析,P<0.05有顯著性差異

2結(jié)果

2.1HDL亞類的峰型鑒定

HDL標(biāo)準(zhǔn)品的電泳圖譜見圖2,HDL被分為2個區(qū)帶(a,b區(qū)帶),其出峰時間分別為1.5min和1.8min,4min內(nèi)完成分離根據(jù)Havel等[10]報道的超速離心法制備HDL2和HDL3,HDL2加入到分析樣品中b區(qū)帶明顯增高、面積增大,見圖3;HDL3加入到分析樣品中a區(qū)帶明顯增寬、面積增大,見圖4可以判定快速遷移峰a為HDL3,慢速遷移峰b為HDL2

2.2沉淀劑處理前后血脂水平的測定

1為隨機(jī)選取一健康體檢者血清標(biāo)本,生化分析儀測得的沉淀劑處理前后血脂水平沉淀劑處理后血清被2倍稀釋,所以處理后測得指標(biāo)乘以2

Fig.2EletropherogramoftheseparationofstandardHDLTheinjectionconcentrationofHDLwas80滋mol/L.Separationconditions:Samplebuffersolutioncontained0.2mmol/LSDS,40mmol/LTricine,50mmol/LMEGatpH8.5.Separationbuffersolutioncontained0.01mmol/LSDS,40mmol/LTricine,50mmol/LMEGatpH8.5,withEat450V/cm. 

Fig.2EletropherogramoftheseparationofstandardHDLTheinjectionconcentrationofHDLwas80滋mol/L.Separationconditions:Samplebuffersolutioncontained0.2mmol/LSDS,40mmol/LTricine,50mmol/LMEGatpH8.5.Separationbuffersolutioncontained0.01mmol/LSDS,40mmol/LTricine,50mmol/LMEGatpH8.5,withEat450V/cm.

Fig.3EletropherogramofthemixturesofstandardHDLand2滋gHDL2SeparationconditionswerethesameasdescribedinFigure2. 

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Fig.4EletropherogramofthemixturesofstandardHDLand2滋gHDL3SeparationconditionswerethesameasdescribedinFigure2. 

Fig.4EletropherogramofthemixturesofstandardHDLand2滋gHDL3SeparationconditionswerethesameasdescribedinFigure2.

Table1Theserumlipidlevelsofhealthysubjectsbeforeandaftertheserumtreatedbyprecipitatingagent

Table1Theserumlipidlevelsofhealthysubjectsbeforeandaftertheserumtreatedbyprecipitatingagent 

2.3臨床血清HDL的分析

5、圖6分別為健康體檢者和CHD患者血清標(biāo)本連續(xù)3次電泳分離結(jié)果全自動生化分析儀測得HDL-C濃度分別為1.78mmol/L和0.56mmol/L.

Fig.5EletropherogramsofthehealthysubjectanditsreproducibilitySeparationconditionswerethesameasdescribedinFigure2. 

Fig.5EletropherogramsofthehealthysubjectanditsreproducibilitySeparationconditionswerethesameasdescribedinFigure2.

Fig.6EletropherogramsofthepatientwithCHDanditsreproducibilitySeparationconditionswerethesameasdescribedinFigure2. 

Fig.6EletropherogramsofthepatientwithCHDanditsreproducibilitySeparationconditionswerethesameasdescribedinFigure2.

2.4CHD患者與健康體檢者HDL亞類的峰面積

2為受試標(biāo)本HDL2、HDL3峰面積的統(tǒng)計(jì)學(xué)結(jié)果,可見CHD患者HDL2(P<0.001)峰面積顯著低于健康體檢者組,CHD患者HDL3(P<0.001)峰面積顯著高于健康體檢者組,提示CHD患者HDL2有減少趨勢,HDL3有增多趨勢

Table2PeakareaofserumHDLsubclasses

Table2PeakareaofserumHDLsubclasses 

3討論

微流控芯片電泳可方便實(shí)現(xiàn)小體積(nl)進(jìn)樣、分離等操作,還可在分離時施加常規(guī)毛細(xì)管電泳難以達(dá)到的高場強(qiáng),能達(dá)到快速、高效分離微流控芯片電泳用于血清脂蛋白的分離分析是由Weiller等于2002年首次報道的,本研究組前期也有過基于微流控芯片電泳技術(shù),利用自制的微芯片結(jié)合LIF檢測系統(tǒng)3min內(nèi)分離血清HDL、低密度脂蛋白和極低密度脂蛋白[6]的相關(guān)報道,重復(fù)性和穩(wěn)定性均較好

HDL是由脂質(zhì)(磷脂和游離膽固醇位于顆粒表面,膽固醇酯和三酰甘油位于核心)和蛋白質(zhì)(載脂蛋白和多種少量其他蛋白質(zhì))組成的復(fù)雜大分子.HDL不同亞類可以根據(jù)其密度、顆粒大小、電荷及組成不同進(jìn)行分離,分析方法主要有超速離心法梯度凝膠電泳法質(zhì)子核磁共振光譜法免疫親和層析法雙向電泳-免疫印跡法等,但這些方法多半費(fèi)時耗力,技術(shù)要求高,無法在臨床上推廣應(yīng)用

本研究主要以微流控芯片電泳技術(shù)為平臺,結(jié)合LIF檢測系統(tǒng),構(gòu)建檢測血清HDL亞類的方法研究中首先優(yōu)化了實(shí)驗(yàn)條件Tricine、MEG緩沖液具有較寬的pH范圍,在電泳過程中能夠保持穩(wěn)定的電滲流,使結(jié)果具有良好的重復(fù)性MEG還具有動態(tài)涂層作用,能部分消除管壁對蛋白質(zhì)的吸附我們考察了MEG濃度對實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響,最后發(fā)現(xiàn)MEG濃度為50mmol/L,Tricine濃度為40mmol/L時,HDL得到了最佳分離效果脂蛋白顆粒在堿性溶液中帶負(fù)電荷,電泳過程中,荷質(zhì)比不同的脂蛋白組分在電滲流的驅(qū)動下實(shí)現(xiàn)分離,在極端pH時有利于電滲流,但同時極端pH易使蛋白質(zhì)變性,影響檢測結(jié)果我們對緩沖液pH進(jìn)行優(yōu)化,分別考察了pH值為7.8、8.0、8.2、8.5、8.8、9.2、9.8時HDL亞類的分離效果最后發(fā)現(xiàn),pH為8.5時,HDL分離效率最高蛋白質(zhì)吸附會嚴(yán)重影響分離效率和重復(fù)性,SDS是一種陰離子型表面活性劑,Ceriotti等[12]通過激光散射分析實(shí)驗(yàn)證實(shí),樣品溶液中存在低濃度的SDS時不會引起脂蛋白顆粒結(jié)構(gòu)的改變,我們分別在樣品緩沖液和分離緩沖液中添加了0.2mmol/L和0.01mmol/LSDS,有效提高了分離效率和分離度

實(shí)驗(yàn)中使用的沉淀劑按照中華醫(yī)學(xué)會檢驗(yàn)學(xué)分會推薦的PTA-Mg沉淀法中描述配制,原理是利用沉淀劑中大分子多陰離子化合物(磷鎢酸鹽)與兩價陽離子(鎂離子)沉淀血清中乳糜微粒、低密度脂蛋白、極低密度脂蛋白和脂蛋白(a),離心后上清液中只含有HDL一種脂蛋白由表1可知,代表Table2PeakareaofserumHDLsubclassesCHD(n=18)Healthysubject(n=23)HDL20.285依0.039*0.552依0.096HDL31.394依0.091*1.108依0.074HDL3HDL2HDL3HDL2HDL3HDL20.30.60.91.21.51.82.12.42.73.03.33.63.9t/min0.0伊1000··221生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展Prog.Biochem.Biophys.2010;37(2)HDL的指標(biāo)HDL-C和載脂蛋白A1在沉淀劑處理前后幾乎不變,而代表低密度脂蛋白、極低密度脂蛋白和脂蛋白(a)的另3個指標(biāo)都近似0,由此斷定離心后上清液中只含有HDL一種脂蛋白本實(shí)驗(yàn)中使用的熒光染料NBDC6-ceramide是一種能與脂蛋白顆粒特異性結(jié)合的染料,不受血清中其他物質(zhì)干擾

5、圖6分別為健康體檢者和CHD患者血清HDL連續(xù)3次進(jìn)樣電泳圖譜,HDL3和HDL2峰均得到基線分離,且重現(xiàn)性良好,圖5、圖6中HDL2峰的出峰時間和峰面積相對標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為2.76%、2.92%和2.85%、2.93%,HDL3峰的出峰時間和峰面積相對標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為2.15%、2.24%和2.17%、2.31%2為18例CHD患者血清標(biāo)本和23例健康體檢者血清標(biāo)本的HDL亞類峰面積統(tǒng)計(jì)結(jié)果可見,CHD患者HDL2顯著降低(P<0.01),HDL3顯著升高(P<0.01),可能是因?yàn)镃HD患者逆向轉(zhuǎn)運(yùn)膽固醇的能力降低,新生的HDL3較難轉(zhuǎn)變?yōu)槌墒斓腍DL在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中,我們將進(jìn)一步優(yōu)化方法學(xué),并選擇合適的內(nèi)標(biāo),爭取快速簡便完成定量測定

綜上所述,本研究以微流控芯片電泳技術(shù)為平臺,結(jié)合LIF檢測系統(tǒng),HDL亞類在4min內(nèi)達(dá)到高效分離,重復(fù)性較佳,測試費(fèi)用低廉,彌補(bǔ)了傳統(tǒng)檢測方法費(fèi)時、繁瑣等不足,具有較大的推廣價值

文獻(xiàn)來源生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展DOI:10.3724/SP.J.1206.2009.00506作者:鄭慧斐叢輝王惠民(轉(zhuǎn)載僅供參考學(xué)習(xí)及傳遞有用信息,版權(quán)歸原作者所有,如侵犯權(quán)益,請聯(lián)系刪除)


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